Activation de bourgeons latents et utilisation de fragments de tige du bananier pour la propagation en masse de plants en conditions horticoles in vivo

Activation of latent buds and use of banana stem fragments for the in vivo mass propagation of seedlings

Centre Africain de Recherches sur Bananiers et Plantains (CARBAP), Njombe, BP 832, Douala, Cameroun

Résumé

Introduction. Les techniques de multiplication in vitro de bananiers ne sont pas adaptées aux paysans. Par ailleurs, l'utilisation de techniques de pépinière in vivo permet d'augmenter le taux de multiplication des bananiers au champ, mais elle présente le risque de multiplier du matériel contaminé et de perdre de nombreux bourgeons présents sur le pied mère. Pour pallier ces problèmes, nous avons mis au point au CARBAP (Cameroun) une nouvelle technique de multiplication de masse in vivo, la technique des “plants issus de fragments de tige” (PIF) qui permet d'activer des bourgeons latents et de produire rapidement hors sol des quantités importantes d'un matériel de plantation sain. Matériel et méthodes. L'activation des bourgeons latents a été testée au cours d'une première expérience. Des explants munis d'un seul bourgeon ont été prélevés sur des tiges de bananiers de trois variétés de plantain (AAB) et d'une variété de banane (AAA), puis ils ont été ensemencés dans un germoir. Une deuxième expérience a testé les capacités de prolifération de certains bananiers. Des explants à plusieurs bourgeons, obtenus à partir de petits rejets de bananier `Grande naine' (AAA) et de quatre cultivars de plantains (AAB), ont été prélevés puis incisés en croix avant d'être mis en germoir. Le temps nécessaire à l'apparition des premières pousses, le taux de débourrement, le nombre de pousses formées et sevrées, et la durée de formation des pousses jusqu'au sevrage ont été mesurés. Résultats. À l'issue de la première expérience, les bourgeons récupérés 80 j après l'ensemencement des explants ont représenté (4 à 15) fois le nombre de pieds mères utilisés. Ce nombre a cependant varié avec la variété, l'état physiologique et la qualité du matériel initial. Il en a été de même pour le temps de réponse compris entre (3 et 4) semaines et pour le taux de débourrement des bourgeons. À l'issue de la deuxième expérience, des taux de prolifération moyens de (10 à 20) pousses par explant ont été obtenus en (30 à 40) j sur (60 à 70) % des explants de plantains. Au cours de cette même période, un maximum de 25 pousses par explant a été observé chez Bâtard tandis que French clair a pu produire, dans 13 % des cas, entre (28 et 36) pousses par explant. Conclusion. La technique des PIF permet d'induire in vivo une active prolifération de bourgeons sur des fragments de tige de bananiers dans des conditions particulières de température et d'hygrométrie et sans adjonction d'hormones. Elle est facilement utilisable par les planteurs.

Abstract

Introduction. In vitro multiplication techniques are not adapted to banana growers. Moreover, the use of in vivo seedbed techniques makes it possible to increase the rate of banana multiplication in the field, but it presents the risk of multiplying contaminated materials and losing many buds present on the mother plant. To mitigate these problems, the CARBAP (Cameroon) have developed a new technique for in vivo mass multiplication, the technique of the “seedlings resulting from stem fragments” (PIF), which allows the activation of latent buds and the quick production of large quantities of healthy plantation materials in soil-less culture conditions. Materials and methods. Activation of latent buds was tested during a first experiment. Explants provided with only one bud were taken from banana shoots of three plantain (AAB) varieties and a banana (AAA) variety, then they were cultured in a germinator. A second experiment tested banana proliferation capacities. Explants with several buds, obtained from small suckers of `Grande Naine' (AAA) and from four plantain (AAB) cultivars, were taken, then incised across before being put in a germinator. The time necessary for the appearance of the first shoots, rate of bud burstings, number of formed and separated shoots, and time for the shoot formation until the seedling isolation were measured. Results. At the end of the first experiment, buds recovered 80 d after the explant culture were (4 to 15) times as numerous as the number of mother plants used. However, this number varied with the variety, the physiological stage and the initial quality of the material. It was the same for the response time, ranging between (3 and 4) weeks, and for the rate of bud burstings. At the end of the second experiment, the average proliferation rates were (10 to 20) shoots per explant, obtained in (30 to 40) d with (60 to 70)% of plantain explants. During the same period, a maximum of 25 shoots per explant was observed with `Bâtard' while `French Clair' could produce between (28 and 36) shoots per explant in 13% of the cases. Conclusion. The PIF technique allows the in vivo induction of an active bud proliferation on banana stem fragments under particular conditions of temperature and hygrometry and without hormone addition. It is easily usable by growers.