La micropropagation d’Annona glabra L. à partir de segments nodaux

Micropropagation of Annona glabra L. from nodal segments

¹ Département de Biologie, Université Fédérale de Lavras, CP 37, 37200-000, Lavras, MG, Brésil
² Département d’Agriculture, Université Fédérale de Lavras, CP 37, 37200-000, Lavras, MG, Brésil
³ Département de Botanique, écologie et zoologie, Université Fédérale du Rio Grande do Norte, 59072-970, Natal, RN, Brésil

Auteur de correspondance : renpaiva@ufla.br

Résumé

Introduction. La propagation in vitro d’A. glabra L. non encore étudiée pourrait permettre de remédier à certaines difficultés de multiplication de cette espèce fruitière ligneuse. Des techniques de micropropagation ayant été déjà expérimentées avec succès avec d’autres espèces d’Annona (A. squamosa, A. cherimola, A. muricata), nous avons cherché à développer un système complet de micropropagation d’A. glabra L. en utilisant des explants de jeunes plantules. Matériel et méthodes. Pour la phase de prolifération de bourgeons axillaires (durée 30 jours), des boutures de segments nodaux prélevées sur la tige de jeunes plantes matrices ont été mises en culture dans un milieu de base MS supplémenté en différentes concentrations de BAP, utilisée seule ou en combinaison avec différentes concentrations d’ANA, et avec ou sans 1,0 mg de GA₃·L^–1. À l’issue de cette phase, le nombre moyen de tigelles obtenues par explant et leur taille moyenne ont été mesurés pour chacun des traitements. Pour l’enracinement des tigelles obtenues à l’issue de cette prolifération, diverses concentrations d’AIB et différents pH du milieu ont été testés (durée 15 jours). À la fin de cette phase, le nombre moyen de racines obtenues par tigelle et leur taille moyenne ont été évalués. L’acclimatation des microplants a ensuite été suivie en conditions contrôlées pendant 21 jours. Résultats et discussion. Tous les traitements, même ceux dépourvus de régulateurs de croissance, ont permis d’obtenir en moyenne 1,5 tigelles par segment nodal. Toutefois, les tigelles les plus développées ont été obtenues en utilisant 0,5 mg·L^–1 de BAP utilisé seul. L’addition de 1,0 mg de GA₃·L^–1 au milieu de multiplication n’a pas été favorable au développement des tigelles. Durant l’expérimentation in vitro, une nécrose de l’extrémité des tigelles et une abscission foliaire ont pu être observées ; cela pourrait être lié à un déficit en calcium et à l’accumulation d’éthylène à l’intérieur du récipient de culture. Le pourcentage le plus élevé de boutures enracinées et le plus grand nombre de racines produites par explant ont été obtenus sans addition d’AIB au milieu de culture, en utilisant 4,0 mg·L^–1 de charbon actif et un pH de 5,0. Les microplants avec racines ont été acclimatés avec succès.

Abstract

Introduction. In vitro propagation of A. glabra L., not yet studied, could make it possible to resolve certain difficulties of multiplication of this woody fruit-bearing species. Techniques of micropropagation having been already successfully tested with other species of Annona (A. squamosa, A. cherimola and A. muricata), we aimed at developing a complete micropropagation system for A. glabra L. by using explants of young seedlings. Material and methods. For the phase of axillary bud proliferation (duration 30 days), cuttings of nodal segments removed from juvenile plants were cultured in a basic medium MS supplemented with various concentrations of BAP, used isolated or in combination with various concentrations of NAA, and with or without 1.0 mg of GA₃·L^–1. At the end of this phase, the average number of shoots obtained by explants and their average size were measured for each treatment. For the rooting of shoots obtained at the end of this proliferation phase, various concentrations of IBA and different pH were tested in the medium (duration 15 days). At the end of this phase, the average number of roots obtained by shoots and their average size were evaluated. The acclimatization of the microplants was then followed in controlled conditions for 21 days. Results and discussion. All the treatments, even those without growth regulators, made it possible to obtain on average 1.5 shoots per nodal segment. However, the most developed shoots were obtained by using 0.5 mg·L^–1 of BAP used alone. The addition of 1.0 mg of GA₃·L^–1 to the multiplication medium was not favorable to the development of shoots. During the in vitro experimentation, shoot end necroses and foliar abscission could be observed; these could be related to a calcium deficit and an accumulation of ethylene inside the culture flask. The highest percentage of shoots with roots and the greatest number of roots produced by explants were obtained without addition of IBA to the culture medium, by using 4.0 mg·L^–1 of active charcoal and a pH of 5.0. The microplants with roots were acclimatized successfully.